把DNA加入感受態細胞時產生泡沫有什麼影響

2021-03-04 05:21:39 字數 4896 閱讀 2897

1樓:北京索萊寶科技****

沒有什麼影響,放心做下去吧

就是不要吹打,輕輕攪一下就好了

因為感受態比較脆弱,吹打會殺死它們。由於鈣等離子附著在細胞膜上,形成液晶狀態,所以細胞膜會變得很脆弱,在轉化復甦之前,都要輕輕地操作

影響感受態細胞製備的因素有哪些

2樓:淵源

1.細菌的生長狀態:實驗中應密切注視細菌的生長狀態和密度,盡量使用對數生長期的細胞(一般通過檢測od600來控制。dh5α菌株 od600為 0.

5 時細胞密度是 5 × 107/ml )。

2.所有操作均應在無菌條件和冰上進行。

3.經 cacl2處理的細胞,在低溫條件下,一定的時間內轉化率隨時間的推移而增加,24小時達到最高,之後轉化率再下降(這是由於總的活菌數隨時間延長而減少造成的)。

4.化合物及無機離子的影響:在 ca2+的基礎上聯合其他二價金屬離子(如 mn2+或 co2+)、 dmso 或還原劑等物質處理細菌,可使轉化效率大大提高( 100-1000 倍)。

5.所使用的器皿必須乾淨。跡量的去汙劑或其它化學物質的存在可能大大降低細菌的轉化效率。

6.質粒的大小及構型的影響:用於轉化的應主要是超螺旋的 dna。

7.一定範圍內,轉化效率與外源 dna 的濃度呈正比。

感受態細胞的製備時有什麼注意事項

3樓:置嚼勒眯

方法一:細菌轉化的方法多以mendel和higa(1970)的發現為基礎,其基本方法是用冰預冷的cacl2或多種2價陽離子等處理細菌,使之進入感受態得以轉化。用cacl2製備新鮮或冷凍的大腸桿菌感受態細胞,常用於成批製備感受態細菌。

本法適用於大多數大腸桿菌菌株,且迅速、重複性好。操作過程簡述如下。1.從37℃培養16~20h的新鮮平板中挑取乙個單菌落(如大腸桿菌dh52),或1ml新鮮的16~20h過夜培養物,轉到乙個含有100mllb培養基的1l或500ml燒瓶中。

於37℃劇烈振搖培養約2~3h(旋轉搖床200~300r/min),每隔20~30min測量od600值≈0.4。2.在無菌條件下將細菌轉移到乙個,用冰預冷的50ml聚丙烯離心管中,在冰上放置10~20min。

3.於4℃用sorvallgs2轉頭(或與其離心管相配的轉頭)以4000r/min離心10min,以**細胞。4.倒數培養液,將管倒置1min以使最後殘留的痕量培養液流盡。5.以10ml用冰預冷的0.

1mmcacl2重懸每份沉澱,放於冰上。6.於4℃用sorvallgs3轉頭(或與其相應的轉頭)以4000r/min離心10min,以**細胞。7.倒出培養液,將管倒置1min以使最後殘留的痕量培養液流盡。

8.每50ml初始培養物用2ml冰預冷的0.1mcacl2重懸每份沉定,此時,可以迅速將細胞分裝成小份,液氮中冰凍,-70℃貯存備用。9.用冷卻的無菌吸頭從每種感受態細胞懸液中各取200μl轉移到無菌的微量離心管中,每管加dna或連線反應混合物(體積≤10μl,dna≤50ng),輕輕旋轉以混勻內容物,在冰中放置30min。

10.將離心管放到預加溫到40℃的迴圈水浴中的試管架上,放置90s~2min,不要搖動試管。11.快速將管轉移到冰浴中,使細胞冷卻1~2min。12.每離心管加800μlsoc培養基,用水浴將培養基加溫到37℃,然後將管轉移到37℃搖床上,溫育45min使細菌復甦,並且表達質粒編碼的抗生素抗性標記基因。

13.將適當體積(每個90mm平板可達200μl)已轉化的感受態細胞轉移到含200mmol/lmgso4和相應抗生素的sob培養基上。14.將平板置於室溫至液體被吸收。15.倒置平皿,於37℃培養,12~16h後可出現菌落。

方法二:cassuperone-step***petentcellprepskit採用一種簡單便捷的方法處理大腸桿菌,使其成為感受態細胞,便於質粒dna的轉化,可滿足一般實驗的要求。與cacl2法相比具有多種優點:

使用方便,只需一步即可完成感受態細胞的製備;轉化效率略高於cacl2法,一般可達106-108cfu/μg,滿足一般實驗需要;感受態細胞製成後即可儲存於-70℃,無須加入甘油,並且經長期儲存活力無明顯下降。準備工作:1.從液氮或低溫冰箱中取出的大腸桿菌凍存菌,在lb平板上劃線,37度過夜至長出單菌落。

挑形態飽滿的單菌落2個,分別接種5mllb培養基中,37℃,250rpm,過夜培養。2.次日從5mllb培養物吸取200μl轉入50mllb培養基中(250ml錐形瓶),37℃,250rpm培養2小時,此時od600約0.4—0.

5。感受態細胞的製備:3.吸取1ml菌液到1.

5ml離心管裡,5000rpm離心5分鐘,棄去上清。4.加入100μl預冷的solutiona,懸浮菌體,冰浴30分鐘。5.此時感受態細胞已經製成可立即使用或-70℃儲存。

細胞轉化:6.在感受態細胞中加入100pg-10ngdna,混勻,冰浴30分鐘,然後42℃1分鐘熱擊,再次冰浴2分鐘。加入0.

9mllb培養基,20μlsolutionb,37℃,振盪培養1小時。7.取適當菌液(100-200μl)塗佈相應抗性的平板。8.過夜培養約16個小時,數菌落數,計算轉化率。

補充說明:1.所用器具一定要清潔;2.操作步驟2中培養基的裝量也是很重要的,建議裝量不要高於此值:500ml錐形瓶裝100ml培養基,250ml錐形瓶裝50ml培養基;3.在收穫菌體前半小時還可以在培養基中加入20mm的mgcl2,效果會更好一些;4.為保證細胞處於對數生長期,培養後的菌體的od值不要高於0.

6;5.製備感受態細胞時所有操作盡量保證在冰上操作;6.細胞轉化操作步驟6中也可以不必進行熱擊,冰浴後直接加入新鮮lb,簡化操作步驟,但轉化效率低於熱擊方法,適用於對轉化率要求不高的實驗。方法三:1、取1%大腸桿菌e.

coli接種於含2mllb培養基的試管中,37℃振盪培養過夜2、取0.1ml過夜培養物轉種於含10mllb培養基的三角瓶中,37℃振盪培養3h至od600=0.3ml離心管中,冰浴10min。

4、在4℃下以4000rpm離心5min,去上清液5、把菌體懸浮於15m1冰冷的0.1mcacl2溶液中,置冰上30min6、然後再在4℃下以4000rpm離心10min,去上清液7、將菌體懸浮於0.1mlcacl2溶液中,冰浴放置4-12hr備用。

方法四:(1)將1ml過夜培養的細菌(如dh52、tg1、tm101)接種於100ml2×yt培養於500ml燒瓶。於37℃刷烈振盪,通常≥200rpm培養的細菌密度約od550=0.

2~0.5(5×107cells/ml),需2~4h。(2)將培養物放於冰上致冷10min,於4℃離心細菌培養物,10000rpm離心10min。

(3)棄除上清,將細菌懸浮於原始培養體積的一半(約50ml)的50mmcacl2和10mmtris·hcl(ph8.0)無菌冷凍液體中。(4)將細菌懸浮放在冰上約5min,然後將懸浮物於4℃10000/rpm離心10min。

(5)棄上清,懸浮細菌於原始培養體積的1/15的50mmcacl和10mmtris·hcl(ph8.0)無菌冷凍中。此時的細胞是感受態細胞,即可用於轉化。

200μl分裝於無菌的1.5ml微量離心管中,貯存於-80℃冰箱中。方法五:

tsb法(也是本人熱衷的方法)1.藥品製備1mmg2+(1mmgso4和1mmgcl2等體積混合),用0.22um濾膜超濾除菌。

tsb液(30ml/80ml菌液)(現配現用):peg33503gtryptone0.3gyeastextract0.

15gnacl0.3g2.步驟:

(1)活化菌株(2)挑單菌落培養於5ml的液笨培養基中(3)取液體培養物50ul於80ml的液體培養基中進行擴大培養(4)370c培養3-4小時,od600在0.4-0.6(5)離心,去上清(6)加入20mltsb,重懸(7)離心,去上清(8)加入10mltsb,再加入15-20%的甘油,分裝儲存注,整個操作過程均應在冰上進行。

所用藥品均需滅菌。轉化程式(1)取出200μl感受態細胞慢慢使其溶化,並立即放於冰上,加入dna或連線反應混合物,dna量通常≤50mg。用手指彈打試管10次,使之混勻,然後放在冰上40~45min。

(2)將管放於42℃水浴中2min。(3)然後每管直接加入1.0ml2×yt培養基,倒置混勻,並於37℃培養8~12h,幹浴或水浴,不需振搖。

此期間使細菌生長並開始表達抗菌素。(4)每200μl轉化混合物分別於6個2×yt瓊脂培養板上補充相應抗生素,並含有x-gal(20mg/ml)、iptg(200mg/ml)。

大腸桿菌感受態細胞製備時的cacl2濃度到底是多少

4樓:匿名使用者

(1)質粒dna的質量和濃度: 用於轉化的質粒dna應主要是超螺旋態的,轉化率與外源dna的濃度在一定範圍內成正比,但當加入的外源dna的量過多或體積過大時,則會使轉化率下降。一般地,dna溶液的體積不應超過感受態細胞體積的5%,1ng的cccdna即可使50ul的感受態細胞達到飽和。

對於以質粒為載體的重組分子而言,分子量大的轉化效率低,實驗證明,大於30kb的重組質粒將很難進行轉化。此外,重組dna分子的構型與轉化效率也密切相關,環狀重組質粒的轉化率較分子量相同的線性重組質粒高10~100倍,因此重組dna大都構成環狀雙螺旋分子。 (2)感受態細胞的質量:

所用的cacl2等試劑均需是最高純度的,並用最純淨的水配製,最好分裝儲存於4℃ (3)細胞的生長狀態和密度 最好從-70℃或-20℃甘油儲存的菌種中直接轉接用於製備感受態細胞的菌液。不要用已經過多次轉接,及貯存在4℃的培養菌液。細胞生長密度以每毫公升培養液中的細胞數在5×107個左右為佳。

即應用對數期或對數生長前期的細菌,可通過測定培養液的od600控制。對tg1菌株,od600為0.5時,細胞密度在5×107個/ml左右。(應注意od600值與細胞數之間的關係隨菌株的不同而不同)。

密度過高或不足均會使轉化率下降。 (二)感受態細胞轉化中的影響: 整個操作過程均應在無菌條件下進行,所用器皿,如離心管,移液槍頭等最好是新的,並經高壓滅菌處理。

所有的試劑都要滅菌,且注意防止被其它試劑、dna酶或雜dna所汙染,否則均會影響轉化效率或雜dna的轉入。整個操作均需在冰上進行,不能離開冰浴,否則細胞轉化率將會降低。

製備感受態細胞時,應特別注意哪些環節

1 整個實驗過程均需置於冰上進行。2 選用對數生長期細胞,od600在0.4 0.5間。3 所有操作必須做到嚴格無菌,防止雜菌和雜dna的汙染。4 動作不應太劇烈,減少細胞的機械損傷。保證感受態細胞的活性,所有操作盡量在冰上,暴露在空氣中的時間盡量短。1 整個實驗過程均需置於冰上進行。2 選用對數生...

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